SIEX - Sistema de Informações de Extensão

Plano de ensino: 1) Nome do curso e Área do conhecimento: VIII Curso de Inverno em Assuntos Atuais de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia - 2024. Curso de extensão universitária cadastrado na Pró-Reitoria de Extensão e Cultura da EPM-UNIFESP (PROEX), oferecido pelo Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia (PMI) da EPM-UNIFESP. 3) Objetivos O objetivo geral do curso é atualizar os participantes em temas atuais relacionados às áreas de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia, que apresentaram grande desenvolvimento e destaque dentro do universo científico em algum aspecto do seu conhecimento. Os objetivos específicos são: proporcionar aos participantes do curso maior contato com os temas e aprendizagem de técnicas e análises atualmente vivenciados na pesquisa científica. 4) Público-Alvo O Curso tem como público alvo alunos de graduação de cursos da área de saúde, nos dois últimos anos de conclusão e, também, alunos recém-formados. 5) Coordenação Coordenadora: Dra. Juliana Terzi Maricato Vice-Coordenadora: Prof. Dra. Rosana Puccia Vice-Coordenador: Prof. Dr. Alexandre Salgado Basso 6) Carga horária O curso tem duração de cinco dias com carga horária total de 40 horas, divididas da seguinte forma: (i) carga horária de aulas teóricas em sala: 20 horas; (ii) carga horária de aulas práticas: 15 horas; (iii) carga horária de preparação do mini-projeto final: 5 horas. 7) Número de vagas Vinte e quatro (24) vagas 8) Período de realização O curso será realizado do dia 22 a 26 de julho de 2024 das 8:00h às 18:00h nas dependências da EPM-UNIFESP, Vila Clementino, São Paulo -SP. 9) Estratégias de Divulgação A divulgação será feita por meio do site do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia da EPM-UNIFESP <https://www.microimunounifesp.com.br>, também por meio do site do Curso de Inverno <https://cursodeinvernopmi.wixsite.com/2024> e instagram do Curso de Inverno <@cursodeinvernopmi>

Objetivos e Resultados Esperados: O objetivo geral do curso é atualizar os participantes em temas atuais relacionados às áreas de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia, que apresentaram grande desenvolvimento e destaque dentro do universo científico em algum aspecto do seu conhecimento. Os objetivos específicos são: proporcionar aos participantes do curso maior contato com os temas e aprendizagem de técnicas e análises atualmente vivenciados na pesquisa científica. Espera-se que com esta ação os alunos obtenham conhecimentos atuais em Microbiologia, Imunologia e Parasitologia e que conheçam as Linhas de Pesquisa, Orientadores do PPG Microbiologia e Imunologia, além de conhecerem a infra estrutura dos laboratórios de pesquisa da EPM-UNIFESP, para que seja possível engajarmos novos alunos vindos desse curso em nosso e em outros PPGs institucionais.

Justificativas: O Curso de Inverno em Assuntos atuais de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia foi criado em 2016 com o intuito de atualizar e aprofundar conceitos básicos e atualidades em imunologia, discutir aspéctos atuais de diversas doenças infecciosas, da relação parasita-hospedeiro, noções teóricas e práticas de métodos científicos utilizados na atualidade, além proporcionar aos alunos participantes a oportunidade de conhecer melhor as linhas de pesquisa e interagir com os orientadores do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia, além de outros programas de Pós-Graduação da EPM-UNIFESP. Em 2024, o curso está na sua oitava edição e, desde a primeira (ocorrida em 2016), recebe alunos de todas as regiões do Brasil, os quais consideram o curso uma grande contribuição para sua formação acadêmica. Além disso, desde as primeiras edições do curso, alunos participantes têm ingressado nos programas de Pós-Graduação da EPM-UNIFESP e demonstrado ótimo desempenho no desenvolvimento dos seus projetos de pesquisa e outras atividades inerentes à Pós-Graduação e Pesquisa. Assim, esse curso representa para os alunos uma oportunidade de entrarem em contato com a pesquisa científica de ponta e, dessa forma, difundir os conhecimentos adquiridos em outras universidades brasileiras.

Metodologias: O curso será ministrado por meio de aulas teóricas expositivas sobre cada tópico a ser abordado, aulas expositivas para fundamentação teórica das técnicas experimentais a serem desenvolvidas e aulas práticas para exposição e desenvolvimento das técnicas propostas. Após duas edições nas quais trabalhamos conceitos da imunologia básica como metodologia nas aulas práticas tendo como tema central a ¿Dengue: atualidades, vacinas e inovações¿, para este ano o curso foi reformulado e o tema principal para as aulas práticas será desenvolvido sobre a seguinte questão: ¿Como é elaborada, construída, avaliada uma vacina de proteína recombinante?¿. A partir dessa pergunta e utilizando como modelo uma vacina de proteína recombinante direcionada ao vírus da Dengue (DENV), serão abordados conceitos como: construção, obtenção e isolamento de plasmídeos de DNA recombinante, expressão de proteínas heterólogas em vetores bacterianos, imunização com plasmídeos de DNA recombinante, direcionamento, especificidade e avaliação da resposta imune a vacinas de proteína recombinante, a importância e uso de proteínas recombinantes como ferramenta para estudos científicos. Assim, realizaremos técnicas como: clonagem e digestão plasmidial, transformação bacteriana, mini-prep e western blot para simular a construção de uma vacina, bem como a expressão da(s) proteína(s) imunogência(s); ELISA, Western blot, Citometria de fluxo e ELISPOT para avaliar a eficiência, eficácia e especificidade da resposta imune gerada a partir da vacina de DNA construída. Além disso, nas aulas expositivas de fundamentação teórica das técnicas experimentais a serem desenvolvidas e aulas práticas, serão discutidos protocolos de imunização e os modelos animais comumente utilizados para desenvolvimento e teste de vacinas de proteínas recombinante. É importante salientar que NÃO será utilizado NENHUM agente ou material biológico com nível de risco maior do que I. Assim, espera-se que os alunos participantes possam compreender, interpretar, elaborar e utilizar como ferramentas as diferentes metodologias e técnicas apresentadas para resolver questões experimentais.

Conteúdo programático com responsáveis pedagógicos por tema/assunto - aula ou grupo de aulas: Dia 1 - Aulas teóricas - Arbovírus Emergentes no Brasil e Vírus da Dengue; apresentação de linhas de pesquisa em Virologia; Fundamentos Técnico-Científicos: clonagem e expressão de proteínas recombinantes; Aula Prática - Clonagem e expressão da proteína recombinante; Dia 2 - Aulas teóricas - Resposta imune aos vírus e Vacinas; apresentação de linhas de pesquisa em Imunologia; Fundamentos Técnico-Científicos: Citometria de Fluxo; Aula Prática - Citometria de Fluxo; Dia 3 - Aulas teóricas - Malária no Brasil e Co-infecções: Malária e Arboviroses; apresentação de linhas de pesquisa em Parasitologia; Fundamentos Técnico-Científicos: Citometria de Fluxo; Aula Prática - Citometria de Fluxo; Dia 4 - Aulas teóricas - Patogênese bacteriana e Plasticidade do Genoma Bacteriano; apresentação de linhas de pesquisa em Bacteriologia ; Fundamentos Técnico-Científicos: Western blot e imunogromatografia; Aula Prática - Western blot e imunogromatografia; Dia 4 - Aulas teóricas - Micoses Emergentes e Esporotricose; apresentação de linhas de pesquisa em Micologia; Elaboração e apresentação dos seminários dos cursistas.

Referências (bibliográficas e outras): - Birnboim,H.C. & Doly,J. A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. Nucleic Acids Res., 7:151323, 1979. - Eckhardt, T. A rapid method for the identification of plasmid desoxyribonucleic acid in bacteria. Plasmid, 1:5848, 1978. - Kado, C.I. & Liu, S.T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J. Bacteriol., 145:136573, 1981. - Meyers,.A.; Sanchez,.; Elwell,L.P. & Falkow,S. Simple agarose method for the identification and characterization of plasmid desoxyribonucleic acid. J. Bacteriol., 127:152937, 1976. - Takahashi, S. & Nagano, Y. Rapid procedure for isolation of plasmid DNA and application for epidemiological analysis. J. Clin. Microbiol., 20:60813, 1984. I. - Nelson, L. D and Cox, M. M. (2018). Princípios de Bioquímica de Lehninger. Artmed, 7° edição. - Anna Eslami and Jesse Lujan JOVI. Western Blot: Preparação de amostras para detecção - https://www.jove.com/video/2359/western-blotting-preparao-de-amostras-paradeteco?language=Portuguese Acesso em: 12/07/2021. - Ofori, E.A., Tetteh, J.K.A., Frimpong, A. et al. (2021). Comparison of the impact of allelic polymorphisms in PfAMA1 on the induction of T Cell responses in high and low malaria endemic communities in Ghana. Malar J. 20, 367. - Tsuboi, T., Takeo, S., Iriko, H., Jin, L., Tsuchimochi, M., Matsuda, S., et al. (2008). Wheat Germ Cell-Free System-Based Production of Malaria Proteins for Discovery of Novel Vaccine Candidates. Infection and Immunity, 76(4), 1702¿1708. - Bio-rad. A guideline to polycrilamide gel electrophoresis and detection. http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/Bulletin_6040.pdf. Acesso em: 21/02/2017 -Cell-singaling. A guide for successful Western Blot. https://media.cellsignal.com/www/pdfs/resources/product-literature/application-western-blotting-guide.pdf Acesso em: 21/02/2017 - Engvall, E (1972 11 22) Enzyme linked immunosorbent assay, Elisa. The Journal of Immunology. 109 (1): 129 135. doi:10.4049/jimmunol.109.1.129 - Charbonnet, Derrick and Evans (2014) Norman Scott, "Systems and methods for immunosorbent assays for single and multiple analytes". - Abbas, A.K., Lichtman, A.H. and Pillai, S. (2015) Cellular and Molecular Immunology. 8th Edition, Elsevier Saunders, Philadelphia, 199-337. - Shah K, Maghsoudlou P (2016) Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): the basics. Br J Hosp Med (Lond). 77(7):C98-101. doi: 10.12968/hmed.2016.77.7.C98. - R&D Systems (2020) What is an ELISA? - Rahim MAFA, Munajat MB, Dian ND et al. (2023) Naturally acquired antibody response to Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax among indigenous Orang Asli communities in Peninsular Malaysia. Front Cell Infect Microbiol. 20;13:1165634. doi: 10.3389/fcimb.2023.1165634.

Modo e critérios da avaliação de aproveitamento: Serão formados quatro subgrupos para as aulas práticas, os mesmos deverão escolher um dos protocolos experimentais realizados como base do trabalho de conclusão. Os alunos deverão elaborar e apresentar um mini-projeto demonstrando o protocolo experimental escolhido pelo grupo, a técnica utilizada e a interpretação dos resultados obtidos durante a aula prática.

Estratégias de Divulgação: Site na Internet do Curso de Inverno , página do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia, Instagram do Curso de Inverno, Instagram do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia, página do Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia (DMIP) da EPM-UNIFESP

Recursos didáticos: As aulas teóricas e práticas foram pensadas e elaboradas de modo a promoverem a integração de conceitos em imunologia, microbiologia, virologia, parasitologia e biologia celular. A interdisciplinaridade é uma característica tradicionalmente presente no Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia (PPGMI). Anfiteatros, salas de aula, material audiovisual e toda a infraestrutura e equipamentos de laboratório para a realização das aulas teóricas e práticas.

Ementa: O Curso de Inverno em Assuntos atuais de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia foi criado em 2016 com o intuito de atualizar e aprofundar conceitos básicos e atualidades em imunologia, discutir aspéctos atuais de diversas doenças infecciosas, da relação parasita-hospedeiro, noções teóricas e práticas de métodos científicos utilizados na atualidade, além proporcionar aos alunos participantes a oportunidade de conhecer melhor as linhas de pesquisa e interagir com os orientadores do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia e Imunologia, além de outros programas de Pós-Graduação da EPM-UNIFESP.